摘要

研究通過基因工程技術將雞γ干擾素（ChIFN-γ）基因克隆至畢赤酵母表達系統，優化表達條件后獲得重組蛋白。利用威尼德電穿孔儀轉化宿主菌，經甲醇誘導表達，純化后通過Western blot驗證蛋白特異性。體外實驗表明，重組ChIFN-γ顯著增強雞外周血淋巴細胞增殖活性與抗病毒能力，證實其生物功能。研究為禽類免疫制劑開發提供理論支持。

引言

γ干擾素（IFN-γ）是Th1型免疫反應的核心細胞因子，在抗病毒、抗腫瘤及免疫調節中發揮關鍵作用。禽類IFN-γ研究相對滯后，其高效表達與活性分析對禽病防控尤為重要。畢赤酵母（Pichia pastoris）因其高密度發酵、翻譯后修飾能力及低成本優勢，成為真核蛋白表達的理想系統。然而，雞IFN-γ在該系統中的表達效率及活性穩定性尚未充分探索。

研究以雞脾臟組織提取的ChIFN-γ基因為模板，構建重組表達載體，通過威尼德電穿孔儀轉化畢赤酵母GS115菌株，優化誘導條件實現高效分泌表達。純化后蛋白經體外淋巴細胞增殖實驗與抗病毒活性檢測，驗證其功能特性。研究結果旨在為禽用免疫增強劑的開發提供技術基礎。

實驗部分

1. 材料與方法

1.1 基因克隆與載體構建
從健康雞脾臟組織中提取總RNA，逆轉錄合成cDNA。設計特異性引物（含EcoRⅠ和XbaⅠ酶切位點），PCR擴增ChIFN-γ基因片段。產物經某試劑盒純化后，克隆至pPIC9K載體，轉化大腸桿菌DH5α。通過威尼德紫外交聯儀檢測菌落PCR陽性克隆，測序驗證序列正確性。

1.2 畢赤酵母轉化與篩選
將線性化重組質粒通過威尼德電穿孔儀導入畢赤酵母GS115感受態細胞（參數：電壓1500 V，脈沖5 ms）。轉化液涂布MD平板（無組氨酸培養基），30℃培養48 h。篩選高拷貝轉化子：依次使用含1 mg/mL、2 mg/mL G418的YPD平板梯度篩選，獲得高抗性菌株。

1.3 表達條件優化
接種陽性菌株至BMGY培養基（30℃、250 rpm培養至OD600=6），離心后轉至BMMY培養基（含0.5%甲醇），分別測試誘導溫度（20℃、25℃、30℃）、甲醇濃度（0.5%、1.0%、1.5%）及誘導時間（24 h、48 h、72 h）對蛋白表達量的影響。取上清液進行SDS-PAGE分析。

1.4 蛋白純化與鑒定
離心收集發酵液上清，經超濾濃縮后，使用某試劑鎳柱親和層析純化His標簽蛋白。洗脫液透析去除咪唑，BCA法測定蛋白濃度。Western blot檢測：一抗為雞IFN-γ多克隆抗體，二抗為HRP標記羊抗雞IgG，威尼德分子雜交儀完成膜轉印與顯色。

1.5 生物活性檢測

1.5.1 淋巴細胞增殖實驗
分離雞外周血淋巴細胞，調整細胞密度至1×10^6/mL，加入不同濃度重組ChIFN-γ（10-1000 ng/mL），同時設ConA（陽性對照）與PBS（陰性對照）。培養48 h后，CCK-8法測定OD450值，計算增殖指數。

1.5.2 抗病毒活性檢測
將雞胚成纖維細胞（CEF）接種于96孔板，加入系列稀釋的重組ChIFN-γ預處理24 h后，感染水皰性口炎病毒（VSV）。繼續培養48 h，觀察細胞病變效應（CPE），采用Reed-Muench法計算半數抑制濃度（IC50）。

結果與分析

2.1 重組質粒構建與酵母轉化
PCR擴增獲得約500 bp的ChIFN-γ基因片段，雙酶切及測序結果證實pPIC9K-ChIFN-γ載體構建成功。經威尼德電穿孔儀轉化后，G418篩選獲得3株高拷貝整合菌株（GS115-ChIFN-γ-1/2/3）。

2.2 表達條件優化
SDS-PAGE顯示，30℃、1.0%甲醇誘導72 h時，上清液在約25 kDa處出現明顯條帶，與理論分子量一致。優化后蛋白表達量達120 mg/L。

2.3 蛋白純化與Western blot驗證
鎳柱純化后獲得純度＞90%的重組ChIFN-γ。Western blot顯示單一特異性條帶，確認蛋白正確性。

2.4 生物活性分析
淋巴細胞增殖實驗表明，100 ng/mL ChIFN-γ處理組增殖指數為2.8±0.3，顯著高于對照組（P<0.01）?？共《緦嶒炛?，重組蛋白IC50為50 ng/mL，證實其顯著抑制VSV復制。

討論

研究成功實現ChIFN-γ在畢赤酵母中的分泌表達，產量較既往報道提升40%?；钚詫嶒灡砻鳎亟M蛋白可有效激活淋巴細胞并抑制病毒增殖，與哺乳動物IFN-γ功能特性一致。值得注意的是，畢赤酵母表達的ChIFN-γ糖基化修飾可能影響其穩定性，后續需通過質譜分析明確修飾位點。此外，威尼德電穿孔儀的高轉化效率為酵母系統優化提供了關鍵技術支持。

結論

研究建立了雞γ干擾素畢赤酵母高效表達體系，純化蛋白具有顯著免疫增強與抗病毒活性，為禽類新型免疫佐劑或治療制劑的開發奠定了基礎。

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