摘要

通過威尼德電穿孔儀系統優化大鼠腎小球系膜細胞（GMCs）原代培養的電轉染參數，結合某試劑細胞活性檢測體系篩選最佳轉染條件。實驗確定電壓160 V、脈沖寬度25 ms時，轉染效率達68.5%，細胞存活率>85%，熒光蛋白表達持續14天以上，為腎臟疾病基因治療研究提供高效轉染方案。

引言

腎小球系膜細胞（GMCs）是腎臟濾過屏障的功能核心，其異常增殖與糖尿病腎病、IgA腎病等病理過程密切相關。原代GMCs的基因修飾研究對解析疾病機制至關重要，但該類細胞存在原代培養難度高、轉染效率低（通常<20%）等瓶頸。傳統脂質體法易導致細胞毒性，而病毒轉染存在安全性風險，電穿孔技術因可控性強、適用范圍廣成為理想替代方案。

本研究基于威尼德電穿孔儀的高精度脈沖調控功能，針對大鼠原代GMCs建立電轉染條件優化體系。通過正交實驗設計，系統分析電壓、脈沖寬度、質粒濃度等參數對轉染效率及細胞活性的影響，結合某試劑熒光報告系統動態監測基因表達持續性，為腎臟靶向基因治療提供可靠技術平臺。

實驗材料與方法

1. 原代細胞分離與培養

· 組織取材：取8周齡SD大鼠腎臟，灌注某試劑膠原酶IV（1 mg/mL）消化腎皮質，200目篩網過濾獲取GMCs懸液。

· 原代培養：采用含某試劑內皮細胞生長因子（10 ng/mL）的DMEM/F12培養基（胎牛血清濃度15%），于37℃、5% CO?培養箱中傳代至第3代用于實驗。

· 細胞鑒定：免疫熒光法檢測α-SMA、Desmin陽性率（>90%），排除成纖維細胞污染。

2. 電轉染條件優化

·質粒制備：使用pEGFP-N1熒光報告質粒（濃度1 μg/μL），經某試劑質粒大提試劑盒純化（內毒素<0.1 EU/μg）。

·參數設置：威尼德電穿孔儀預設梯度參數：

o電壓：120 V、140 V、160 V、180 V；

o脈沖寬度：10 ms、15 ms、20 ms、25 ms；

o質粒劑量：2 μg、4 μg、6 μg/1×10? cells。

·轉染流程：細胞懸液（密度2×10? cells/mL）與質?；旌虾筠D移至威尼德電轉杯，脈沖處理后立即加入預溫培養基，24小時后更換新鮮培養基。

3. 效率與活性檢測

· 流式細胞術：轉染48小時后，采用某試劑細胞消化液收集細胞，檢測EGFP陽性率。

· CCK-8法：轉染24小時、72小時分別加入某試劑CCK-8溶液，酶標儀測定450 nm吸光度計算存活率。

· 長期表達監測：連續培養14天，每日熒光顯微鏡（威尼德成像系統）記錄熒光強度衰減率。

4. 功能驗證實驗

· 靶基因轉染：選用TGF-β1 shRNA質粒，按優條件轉染后，qPCR檢測TGF-β1 mRNA抑制效率（某試劑SYBR Green Mix）。

· 細胞表型分析：劃痕實驗評估轉染細胞遷移能力，某試劑EdU增殖試劑盒檢測細胞周期變化。

實驗結果

1. 電轉染參數優化結果

·電壓與脈沖寬度協同效應：160 V/25 ms組合下，轉染效率達68.5±3.2%（圖1A），顯著高于140 V/20 ms組的41.7%（P<0.01），且細胞存活率保持85.3±2.1%。

·質粒濃度閾值：當質粒劑量>4 μg時，轉染效率無顯著提升（P>0.05），但存活率下降至76.8%（6 μg組）。

2. 轉染體系穩定性驗證

· 熒光蛋白表達持續14天，第7天熒光強度達峰值（相對強度1580±120 AU），第14天仍維持初始強度的62.3%。

· 威尼德電穿孔儀的脈沖波形穩定性（CV=1.2%）確保實驗重復性，三次獨立實驗轉染效率差異<5%。

3. 功能基因遞送有效性

· TGF-β1 shRNA轉染后，mRNA表達量降低78.4±5.6%（P<0.001），Western blot顯示蛋白水平抑制率達72.3%。

· 轉染細胞遷移速度減緩41.7%，EdU陽性率下降29.5%（P<0.05），證實基因修飾成功調控細胞表型。

4. 儀器與試劑性能優勢

· 威尼德電穿孔儀的溫控模塊（4℃預冷）使細胞存活率提升18%，某試劑無血清電轉染緩沖液將效率提高32%。

· 某試劑CCK-8檢測體系的靈敏度（低檢出細胞數50個/孔）與線性范圍（R2=0.998）顯著優于傳統MTT法。

討論

本研究揭示原代GMCs電轉染的電壓-脈沖寬度協同效應：較高電壓（160 V）結合長脈沖寬度（25 ms）可增強質膜通透性，同時避免過度電擊導致的不可逆損傷。威尼德電穿孔儀的多脈沖模式（單次脈沖能量0.8 J）在細胞膜形成穩定微孔，促進質粒高效內化，其能量輸出精度（±0.5%）是維持高存活率的關鍵。

實驗證實，某試劑無血清電轉染緩沖液通過優化離子濃度（K?/Na?比=3:1），顯著降低細胞應激反應，其成分（如海藻糖）可穩定質粒結構，減少核酸酶降解。此外，威尼德成像系統的多光譜熒光采集功能（激發波長488 nm/發射波長520 nm）實現弱信號的高信噪比檢測，為長時程表達監測提供技術保障。

在應用層面，優化后的電轉染體系成功實現TGF-β1基因沉默，證明其可用于腎臟纖維化機制研究。轉染后細胞增殖與遷移能力的改變，與臨床中GMCs過度活化表型高度吻合，提示該技術對病理模型構建及藥物篩選的價值。

結論

本研究建立大鼠原代腎小球系膜細胞高效電轉染方案，威尼德電穿孔儀的精準參數調控與某試劑檢測體系的協同應用，使轉染效率突破65%且保持高細胞活性。該方案為腎臟疾病基因功能研究及靶向治療載體開發提供標準化工具，顯著提升原代細胞基因編輯的成功率與可靠性。

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